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______________________________________________________ Revista Cientíca, FCV-LUZ / Vol. XXXIII, Supl. Esp., 279 - 291, 2023
BIOTECHNOLOGY & OMICS TECHNOLOGIES
Biotecnología y Tecnologías Ómicas
E󰀨ect of custom-designed transfection bu󰀨er
on delivery of genome modication compo-
nents into primary cells of bu󰀨alo, cattle, goats,
and sheep
Shreya Malhotra, Priyanka Singh, Aseem Tara,
Bosco Jose, Devika Gautam, Ram Prasad,
Gaurav Tripathi, Sacchinandan De, Naresh L. Selokar*
Animal Biotechnology Division (ABTD), ICAR-National Dairy
Research Institute, Karnal, Haryana, 132001
*Corresponding author: Naresh L. Selokar (naresh.selokar@icar.gov.in).
ABSTRACT
The transfer of genome-modication components into
farm animal cells is indispensable for the production of ge-
nome-modied and transgenic farm animals. Electroporation
is a physical transfection method when appropriately used;
this technique is safe, simple to use, a󰀨ordable, and e󰀩cient
in transfecting cells from several lineages. Electroporation e󰀩-
ciency depends on various physical parameters, of which cell
type is considered a major factor for transfection e󰀩ciency. Pri-
mary cells are generally less susceptible to transfection than
other cell types due to their nite lifespan and limited expansion
capacity. Previously, we custom-designed a transfection buf-
fer to deliver exogenous genetic components into mammalian
cells. In the present study, we examined the e󰀨ect of the de-
veloped bu󰀨er on transfection rates and cell viability of primary
somatic cells from bu󰀨alo, cattle, goats, and sheep. To achieve
the aims of this study, t primary somatic cells from skin biopsies
were established and were transfected with a Venus-expres-
sion vector (pAcGFPs-Venus). We noticed that transfection
rates of pAcGFPs-Venus were 22.51%, 17.56%, 22.81%, and
16.16% for bu󰀨alo, cattle, goats, and sheep cells, respectively.
We also noticed that cell viability and proliferation rates were
better in the case of goats, sheep, and cattle cells; also, these
cells have less vacuolation than bu󰀨alo cells. In addition, we
also generated MSTN (myostatin) KO (Knockout) cell clones
from these cell populations, in which the e󰀩ciency of single-cell
clone generation was high for goats and sheep cells. In conclu-
sion, our lab-made transfection bu󰀨er can be e󰀩ciently used to
Efecto del tampón de transfección diseñado a me-
dida en la administración de componentes de mo-
dicación del genoma en células primarias de búfa-
los, ganado vacuno, cabras y ovejas
Shreya Malhotra, Priyanka Singh, Aseem Tara,
Bosco Jose, Devika Gautam, Ram Prasad,
Gaurav Tripathi, Sacchinandan De, Naresh L. Selokar*
División de Biotecnología Animal (ABTD), ICAR-Instituto
Nacional de Investigación Láctea, Karnal, Haryana, 132001
*Autor de correspondencia: Naresh L. Selokar (naresh.selokar@icar.gov.in).
RESUMEN
La transferencia de componentes de modicación del
genoma a células de animales de granja es indispensable para
la producción de animales de granja transgénicos y con el ge-
noma modicado. La electroporación es un método de trans-
fección física cuando se utiliza adecuadamente. Esta técnica
es segura, sencilla de utilizar, asequible y ecaz para transfec-
tar células de varios linajes. La eciencia de la electroporación
depende de varios parámetros físicos, de los cuales el tipo de
célula se considera un factor importante para la eciencia de
la transfección. Las células primarias son generalmente menos
susceptibles a la transfección que otros tipos de células debi-
do a su vida útil nita y su capacidad de expansión limitada.
Anteriormente, diseñamos un tampón de transfección perso-
nalizado para administrar componentes genéticos exógenos a
células de mamíferos. En el presente estudio, examinamos el
efecto del tampón desarrollado sobre las tasas de transfección
y la viabilidad celular de células somáticas primarias de búfa-
los, bovinos, caprinos y ovinos. Para lograr los objetivos de
este estudio, se establecieron células somáticas primarias de
biopsias de piel y se transfectaron con un vector de expresión
de Venus (pAcGFPs-Venus). Notamos que las tasas de trans-
fección de pAcGFPs-Venus fueron 22,51%, 17,56%, 22,81%
y 16,16% para células de búfalo, ganado vacuno, cabras y
ovejas, respectivamente. También notamos que la viabilidad
celular y las tasas de proliferación eran mejores en el caso de
células de cabras, ovejas y vacunos; además, estas células
tienen menos vacuolización que las células de búfalo. También
BOT-115 Rev. Cientif. FCV-LUZ, XXXIII, SE, 279-280, 2023, https://doi.org/10.52973/rcfcv-wbc123
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13th World Bu󰀨alo Congress ~ 13er Congreso Mundial de Búfalos / Posters / Biotechnology & Omics Technologies ____________________
generate genome-edited or transgenic farm animals for agricul-
ture, biomedical, and veterinary applications.
Keywords: transfection bu󰀨er, genome modication, CRISPR.
generamos clones de células MSTN (miostatina) KO (Knoc-
kout) a partir de estas poblaciones de células, en las que la
eciencia de la generación de clones unicelulares fue alta para
células de cabras y ovejas. En conclusión, nuestro tampón de
transfección fabricado en laboratorio se puede utilizar de ma-
nera eciente para generar animales de granja transgénicos o
editados con genoma para aplicaciones agrícolas, biomédicas
y veterinarias.
Palabras clave: tampón de transfección, modicación del ge-
noma y CRISPR.