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______________________________________________________ Revista Cientíca, FCV-LUZ / Vol. XXXIII, Supl. Esp., 213 - 239, 2023
was determined by blood centrifugation in a capillary tube, and 
the presence of hemoparasites was determined by staining of 
blood  smears.  The  DNA  of  Leptospira  spp.  was  detected  by 
PCR using two pairs of primers for the markers G1-G2, derived 
from a sequence from the genomic library of L. interrogans se-
rovar icterohaemorragiae, strain RGA, which was described by 
Gravekamp  et  al.  (1993). Additionally, Internal  1 and  Internal 
2  were  derived from  the  sequence  of  the gene  encoding  the 
LipL32  protein  and  specic  to  identify  pathogenic  leptospira, 
described by Haake et al. (2000). Data analysis was performed 
with R (Fisher’s exact test). The hematocrit mean was 21%, and 
all females were negative for hemoparasites (Anaplasma mar-
ginale, Babesia spp., and Trypanosoma spp.). The percentage 
of Leptospira spp. DNA-positive samples with  at  least  one  of 
the markers used was 63%. The marker G1-G2 detected more 
positive samples in comparison with the marker Internal 1-In-
ternal 2 (60.5% vs 7.9%, p<0.0001 respectively). A signicant 
association was observed between the mucosa’s appearance 
and  the  presence  of  Leptospira  spp.  DNA  in  urine  when  the 
G1-G2 was used (p <0.0001). In the case of females with icter-
ic vaginal mucosa, the percentage  of  positive samples (85%, 
17/20, p = 0.001227) was higher than that in bualoes with nor-
mal mucosa (26.66%, 4/15). In addition, in females with icteric 
vaginal mucosa, the odds of a positive sample for Leptospira 
spp. DNA (using the G1-G2 marker) were 14 (95% CI: 2.3427-
119.1974) times more than in females with normal vaginal mu-
cosa. There was no signicant dierence in the percentage of 
positive samples between bualoes grouped as icteric mucosa, 
and congestive mucosa (p= 0.4529), nor between the females 
grouped as congestive and normal mucosa (p= 0.2451). When 
the  Internal  1-2  marker  was  used,  there  was  no  association 
between  the  appearance  of  the  mucosa  and  the  percentage 
of bualoes with Leptospira spp. DNA in the urine (p= 0.1714). 
The presence of hemoglobinuria was not associated with Lep-
tospira spp. DNA in the urine, regardless of the marker used for 
its detection (p>0.05). In conclusion, the data from this study 
indicates  that  the  G1-G2  marker  was  more  ecient  in deter-
mining the presence of Leptospira spp. DNA in urine, and using 
this marker, the icteric vaginal mucosa is associated with Lep-
tospira spp. DNA in urine, thus suggesting that this clinical sign 
should be considered suggestive of the disease.
Keywords: Leptospira, PCR, icterus, water bualoes.
mediante  centrifugación  de la sangre  en  un tubo capilar  y  la 
presencia de hemoparásitos se determinó mediante tinción de 
frotis de sangre. El ADN de Leptospira spp. se detectó median-
te PCR utilizando dos pares de cebadores para los marcadores 
G1-G2, derivados de una secuencia de la biblioteca genómica 
de L. interrogans serovar icterohaemorragiae, cepa RGA, que 
fue descrita por Gravekamp et al. (1993). Además, Internal 1 e 
Internal 2 se derivaron de la secuencia del gen que codica la 
proteína LipL32  y  son  especícos para identicar leptospiras 
patógenas, descrito por Haake et al. (2000). El análisis de los 
datos  se realizó  con  R  (prueba  exacta de  Fisher).  La  media 
del  hematocrito  fue  del  21%  y  todas  las  hembras  resultaron 
negativas para hemoparásitos (Anaplasma marginale, Babesia 
spp. y Trypanosoma spp.). El porcentaje de muestras de ADN 
Leptospira spp. positivas con al menos uno de los marcadores 
utilizados fue del 63%. El marcador G1-G2 detectó más mues-
tras positivas en comparación con el marcador Interno 1-Inter-
no 2 (60,5% vs 7,9%, p<0,0001 respectivamente). Se observó 
una asociación signicativa entre la apariencia de la mucosa y 
la presencia de ADN de Leptospira spp. en la orina cuando se 
utilizó el G1-G2 (p<0,0001). En el caso de hembras con muco-
sa vaginal ictérica, el porcentaje de muestras positivas (85%, 
17/20, p  =  0,001227) fue mayor  que  en  búfalas con mucosa 
normal (26,66%, 4/15). Además, en hembras con mucosa va-
ginal ictérica, las probabilidades de una muestra positiva para 
ADN de Leptospira spp. (utilizando el marcador G1-G2) fue 14 
(IC  95%:  2,3427-119,1974)  veces  más  que  en  hembras  con 
mucosa vaginal normal. No hubo diferencia signicativa en el 
porcentaje de muestras positivas entre las búfalas agrupadas 
como mucosa ictérica y mucosa congestiva (p= 0,4529), ni en-
tre las hembras agrupadas como mucosa congestiva y normal 
(p= 0,2451). Cuando se utilizó el marcador Interno 1-2 no hubo 
asociación  entre  la  apariencia  de  la  mucosa  y  el  porcentaje 
de búfalos con Leptospira spp. ADN en orina (p= 0,1714). La 
presencia de hemoglobinuria no se asoció con Leptospira spp. 
ADN en orina, independientemente del marcador utilizado para 
su detección (p>0,05). En conclusión, los datos de este estudio 
indican que el marcador G1-G2 fue más eciente para determi-
nar la presencia de Leptospira spp. ADN en orina, y utilizando 
este marcador, se asocia la mucosa vaginal ictérica con Lep-
tospira spp. ADN en orina, lo que sugiere que este signo clínico 
debe considerarse sugestivo de la enfermedad.
Palabras clave: Leptospira, PCR, ictericia, búfalos de agua.